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Candidats pour un vaccin contre la malaria
Cycle de vie de Plasmodium
Antigènes de surface de Plasmodium
Antigènes érythrocytaires
de Plasmodium falciparum
Publications
Liens
Candidats pour
un vaccin contre la malaria
Le paludisme, maladie parasitaire
la plus répandue, entraîne la mort de plus de deux
millions de personnes dans le monde chaque année.
Avec l'émergence de résistances aux
médicaments anti-antipaludéens du parasite responsable,
Plasmodium, , le développement d'un vaccin est devenu
prioritaire.
Cycle de vie de Plasmodium
Figure. Cycle
de vie de Plasmodium falciparum.
L’infection par Plasmodium commence
par une courte phase hépatocytaire asymptomatique, suivie
d’une phase érythrocytaire. Cette dernière est
responsable des pathologies associées à la malaria.
Le mérozoite est la forme extra cellulaire du parasite au
stade sanguin. Il envahit les érythrocytes où il se
divise pour produire de nombreux mérozoites qui sont libérés
lorsque la cellule hôte éclate.
Figure. Globules
rouges infectés par Plasmodium falciparum.
(Avec l'aimable autorisation
du Dr. Odile Puijalon, Unité d'Immunologie Moléculaire
des Parasites, I.P.)
Antigènes
de Surface de Plasmodium
Figure. Photo
et représentation schématique d'un mérozoïte
de Plasmodium falciparum. La localisation de quelques antigènes
de surface est indiquée en rouge.
(Photo reproduite avec l'aimable autorisation du Dr. Peter David,
Unité d'Immunologie Moléculaire des Parasites,
I.P.)
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Nous étudions certains antigènes
de surface du mérozoïte de Plasmodium afin de
contribuer à l'optimisation de candidats vaccinaux, mais
également en vue d'approfondir nos connaissances de la biologie
fondamentale de cet organisme.
MSP1 (Merozoite Surface Protein 1) et AMA1 (Apical Merozoite Antigen
1) figurent parmi les antigènes de surface de Plasmodium
les plus étudiés dans le cadre du développement
d'un vaccin contre la malaria.
(a) Merozoite
Surface Protein 1 (MSP1)
(en collaboration
avec le Dr. Shirley Longacre, Institut Pasteur)
Figure. Deux vues orthogonales
de MSP1-19 de P. falciparum (en blue) sous forme de complexe avec
un fragment Fab d'un anticorps monoclonal spécifique (en
vert).
MSP1, qui est impliqué dans
l'invasion érythrocytaire par le parasite, subit plusieurs
coupures protéolytiques au cours du processuss de maturation
du mérozoïte.Dans une première phas, sont ainsi
produits quatre fragments peptidiques, parmi lesquels la partie
C-terminale d'environ 42 kDa (MSP1-42) qui reste accrochée
à la membrane du mérozoïte. Pendant la seconde
phase, qui survient au moment même de l'invasion, MSP1-42
est lui-même scindé en deux fragments d'environ 33
kDa et 11 kDa (historiquement appelé MSP1-19). Cette dernière
coupure est essentielle pour le succés de l'invasion, bien
que le mécanisme du processus n'ait pas encore été
élucidé. Afin de mieux comprendre le rôle de
MSP1 dans l'infection de l'érythrocyte par le mérozoïte
de Plasmodium, et le(s) mécanisme(s) de protection
immunitaire induit(s) par la molécule, nous étudions
la structure de deux fragments recombinants solubles de l'antigène,
MSP1-19 et MSP1-42, ainsi que de leurs complexes avec des anticorps
monoclonaux, par radiocristallographie. La comparaison structurale
entre MSP1-42 et MSP1-19 pourrait nous aider à analyser l'importance
de la maturation protéolytique de MSP-1, nécessaire
pour l'entrée du mérozoïte dans le globule rouge.
Ces études pourraient également aider à mettre
en évidence les régions impliquées dans l'interaction
du parasite avec la cellule hôte. La structure de ces dérivés
polypeptidiques pourrait révéler la distribution spatiale
des résidus polymorphiques et la position des épitopes
protecteurs, informations-clés pour la conception optimale
de candidats vaccinaux. A l'heure actuelle, nous avons déterminé
la structure de MSP1-19 de P. cynomolgi et de MSP1-19 de
P. falciparum, l'espèce la plus pathogène pour
l'homme, sous forme de complexe avec un fragment Fab d'un
anticorps spécifique.
Figure. L'épitope
de MSP1-19 de P. falciparum reconnu par un anticorps monoclonal
spécifique. MSP1-19 est indiqué en bleu, l'épitope
en rouge, et l'anticorps en vert.
(b) Apical Merozoite
Antigen 1 (AMA1)
(en collaboration avec les Drs.
Alan Thomas et Clemens Kocken, B.P.R.C., Rijswijk)
AMA1 est une protéine
membranaire produite par les organelles apicaux du mérozoïte.
Pendant l'invasion érythrocytaire, la protéine se
répartie sur toute la surface du parasite et, de même
que MSP1, subit une série de coupures protéolytiques.
Bien que la fonction de AMA1 ne soit pas encore bien caractérisée
au niveau moléculaire, son importance dans le processus d'invasion
a été démontrée par des études
d'immunisation dans des modéles animaux. Nous avons cristallisé
la région ectoplasmique de la protéine, et nous avons
déterminé sa structure tridimensionnelle.
Antigènes érythrocytaires
de Plasmodium falciparum
P. falciparum Erythrocyte Membrane Protein 1
(En collaboration avec les Dr. Odile Puijalon, Institut Pasteur ;
Dr. Mo Klinkert, Bernhard Nocht Institut, Hamburg ; Dr. David Arnot,
University of Edinburgh)
Après l'invasion érythrocytaire,
Plasmodium falciparum exprime le facteur de virulence PfEMP1
(P. falciparum Erythrocyte Membrane Protein 1), qui est ensuite
présenté à la surface de l'érythrocyte.
PfEMP1 est une adhésine qui confère à la cellule
infectée la capacité de s'auto-agglutiner, d'adhérer
à d'autres cellules saines ou d'être séquestrée
par les cellules endothéliales vasculaires de différents
tissus. Les phénomènes d'agglutination et de séquestration
induits par les érythrocytes infectés sont en lien
direct avec de nombreux effets pathogènes de la malaria.
Nous étudions les domaines de plusieurs variants de PfEMP1
présentant différents récepteurs spécifiques.
Publications
Receptor-binding studies of the DBLg domain of Plasmodium falciparum erythrocyte membrane protein 1 from a placental isolate. C. Badaut, G. Faure, N.G. Tuike Ndam, G. Bertin, A. Chaffotte, A. Khattab, M.Q. Klinkert, P. Deloron & G.A. Bentley.
Mol Biochem Parasitol 151:89-99,2007.
Cross-reactivity studies of an anti-Plasmodium vivax apical membrane antigen 1 monoclonal antibody: binding and structural characterisation. S. Igonet, B. Vulliez-Le Normand, G. Faure, M.M. Riottot, C.H.M. Kocken, A.W. Thomas & G.A. Bentley.
J Mol Biol 366:1523-1537, 2007.
Fine Mapping of an Epitope Recognized by an Invasion-inhibitory Monoclonal Antibody on the Malaria Vaccine Candidate Apical Membrane Antigen 1.C.R. Collins, C. Withers-Martinez, G.A. Bentley, A.H. Batchelor, A.W. Thomas & Blackman MJ.
J Biol Chem 282:7431-7441, 2007.
Functional and immunological insights from the three-dimensional structures of Plasmodium surface proteins.
Bentley GA.
Current Opinion Microbiology. 9 : 395-400, 2006.
Fine mapping of the Duffy antigen binding site for the Plasmodium vivax Duffy-binding protein.
C. Tournamille, A. Filipe, C. Badaut, M-M. Riottot, S. Longacre, J-P. Cartron, C. Le Van Kima,
Y. Colina.
Molecular & Biochemical Parasitology 144 :100–103, 2005
Structural comparison of apical membrane antigen 1 orthologues and paralogues in apicomplexan parasites.Chesne-Seck ML, Pizarro JC, Normand BV, Collins CR, Blackman MJ, Faber BW, Remarque EJ, Kocken CH, Thomas AW, Bentley GA.
Mol Biochem Parasitol. 144:55-67, 2005.
Functional and Immunological Characterization of a Duffy Binding-Like- gamma Domain from Plasmodium falciparum Erythrocyte Membrane Protein-1 Expressed by a Placental Isolate.Chia YS, Badaut C, Tuikue Ndam NG, Khattab A, Igonet S, Fievet N, Bentley GA, Deloron P, Klinkert MQ.
J Infect Dis. 192:1284-1293, 2005.
Crystal structure of the malaria vaccine candidate apical membrane antigen 1.Pizarro JC, Vulliez-Le Normand B, Chesne-Seck ML, Collins CR, Withers-Martinez C, Hackett F, Blackman MJ, Faber BW, Remarque EJ, Kocken CH, Thomas AW, Bentley GA.
Science. 308:408-411. 2005.
Expression, crystallization and preliminary structural analysis of the ectoplasmic region of apical membrane antigen 1 from Plasmodium vivax, a malaria-vaccine candidate.Vulliez-Le Normand B, Pizarro JC, Chesne-Seck ML, Kocken CH, Faber B, Thomas AW, Bentley GA.
Acta Crystallogr D Biol Crystallogr. 60:2040-2043, 2004.
Crystal structure of a Fab complex
formed with PfMSP1-19, the terminal fragment of Merozoite Surface
Protein 1 from Plasmodium falciparum: a malaria vaccine candidate.
Pizarro JC, Chitarra V, Verger D, Holm I, Petres S, Dauterelle
S, Nato F, Longacre S, Bentley GA
Journal of Molecular Biology. 328:1091-1103, 2003.
Crystallization and preliminary
structural analysis of an antibody complex formed with PfMSP1-19,
a malaria vaccine candidate.
Pizarro JC, Chitarra V, Calvet C, Verger D, Bentley GA
Acta Crystallographica. Section D, Biological Crystallographica.
58(Pt7):1246-8, 2002.
The crystal structure of C-terminal
merozoite surface protein 1 at 1.8 Angstrom resolution, a highly
protective malaria vaccine candidate.
Chitarra V, Holm I, Bentley GA, Petres S, Longacre S
Molecular Cell. 3(4):457-464, 1999.
Liens
PAMVAC Pregnancy-Associated Malaria
Vaccine Project
EUROMALVAC European Malaria Vaccine
Development
nombreux liens concernant les diverses initiatives europeennes
et mondiales pour la lutte contre la malaria
Organisation
Mondiale de la Santé
Recommandations
sanitaires aux voyageurs
Unité d'Immunologie
Structurale - Département de Biologie Structurale et Chimie
Institut Pasteur - 25,
Rue du Docteur Roux - 75724 Paris Cedex 15 - FRANCE
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