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PROTOCOLES
•Utilisation du Spectramax
•Utilisation du Nanodrop
•Spécificités des cyanines
•Spécificité des puces Nano et Pico pour Bioanalyseur Agilent
•Protocole d'accès au système de réservation en ligne des appareils de la plate-forme
•Utilisation du Nanodrop
•Spécificités des cyanines
•Spécificité des puces Nano et Pico pour Bioanalyseur Agilent
•Protocole d'accès au système de réservation en ligne des appareils de la plate-forme
Extraction des ARNs et contrôle qualité
Le choix du protocole d’extraction des ARN dépend de plusieurs facteurs et, en premier lieu, de l’organisme étudié, de sa structure, de sa paroi... Il dépend aussi des expériences à réaliser.
Pour les microarrays, le traitement à la DNAse n’est pas obligatoire à condition que le protocole utilisé comporte un traitement au Trizol et qu’une importante marge de sécurité soit prise au moment des prélèvements de phases supérieures aqueuses. Contactez la plate-forme pour plus de précisions.
Pour les microarrays, le traitement à la DNAse n’est pas obligatoire à condition que le protocole utilisé comporte un traitement au Trizol et qu’une importante marge de sécurité soit prise au moment des prélèvements de phases supérieures aqueuses. Contactez la plate-forme pour plus de précisions.
- Préparation d'ARN de Gram +/- au trizol
- Préparation d'ARN de levure
- Contrôle qualité des ARN sur le Bioanalyseur Agilent: protocole puces Nano.
Le nouveau logiciel, 2100 Expert, intègre le calcul automatique du RNA Integrity Number (RIN), mesure objective -valeurs comprises entre 1 et 10- de la qualité des ARN. Pour les expériences de microarrays, il est conseillé d’utiliser des ARN pour lesquels le R.I.N. est supérieur ou égal à 7.
Microarrays
- Mesure de l'intégration des cyanines
- Hybridations sur lames de verre: guide de résolution des problèmes rencontrés
Compléments
> Les cyanines
| Cyanine 3 | Cyanine 5 | |
| Structure | ||
| Longueur d’onde d’excitation | 550 nm | 650 nm |
| Longueur d’onde d’émission | 568 nm | 668 nm |
| Coefficient d’extinction molaire | 150 000 M-1 cm-1 | 250 000 M-1 cm-1 |
| Solution | rose | bleue |
| Couleur conventionnelle sur microarray | vert | rouge |
> Spécificités des puces Nano et Pico du Bioanalyseur Agilent
Puces Nano et Pico
| RNA 6000Nano RNA |
RNA 6000Nano mRNA |
RNA 6000 Pico total RNA |
RNA 6000 Pico mRNA |
|
| Analytical Spécifications | ||||
| Quantitative range | 25-500 ng/µL |
25-500 ng/µL | ||
| Qualitative range | 5-500 ng/µL |
25-500 ng/µL | 50-5000 pg/µL in water | 250-5000 pg/µL in water |
| Sensitivity (S/N>3) | 5pg/µL in water | 25pg/µL in water | 50 pg/µL in water 200 pg/µL in TE |
250 pg/µL in water 500 pg/µL in TE |
| Quantitation reproducibility | 10% CV (within a chip) | 10% CV (within a chip) | 20% CV (within a chip) | 20% CV (within a chip) |
| Quantitation accuracy | 20% CV* | 20% CV* | 30% CV* | 30% CV* |
| Maximum sample buffer strength | 100 mM Tris, 0.1 mM EDTA or 125 mM NaCl or 15 mM MgCl2 |
100 mM Tris, 0.1 mM EDTA or 125 mM NaCl or 15 mM MgCl2 |
50 mM Tris, 0.1 mM EDTA or 50 mM NaCl or 15 mM MgCl2 |
50 mM Tris, 0.1 mM EDTA or 50 mM NaCl or 15 mM MgCl2 |
| Physical Specifications | ||||
| Analysis Time | 13 minutes | 30 minutes | 30 minutes | 30 minutes |
| Samples per chip | 12 | 12 | 11 | 11 |
| Sample volume | 1µL | 1µL | 1µL | 1µL |
| Kit stability | ≥ 4 months at 4°C | ≥ 4 months at 4°C | ≥ 4 months at 4°C | ≥ 4 months at 4°C |
* Determined analyzing the RNA ladder as sample