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Protocoles (au 10 Decembre 2008)
Réactions de séquence en plaque 96 puits - Recommandations
1. Réactifs et produits
- ABI PRISM BigDye Terminator Cycle Sequencing Ready Reaction Kit version 3.1 (Applied Biosystems réf. 4337456, magasin général réf. 99219 )
- ou version 1.1 (Applied Biosystems réf. 4337451, magasin général réf. 98150) à stocker à -20 °C
- Tampon 5X (fourni avec le Kit version 3.1, Applied Biosystems) à stocker à + 4°C
- Plaque 96 puits (ABgene ref. AB1100, magasin général ref. 42741) ou 4titude Dutscher (Dutscher réf : 044754)
- H2O filtrée type MilliQ Synthesis (Millipore)
- Ethanol absolu
- Acétate de sodium 3M pH 5,2
- EDTA 125 mM pH 8
Recommandations
- Il est impératif de mettre les échantillons en colonnes ( de A1 à H1 et ensuite de A2 à H2 etc……) et non en ligne.
- Ecrire sur la tranche de la plaque la référence et la version de la chimie utilisée (v1.1 ou v3.1)
- Vérifier les quantités et la qualité des matrices par une mesure des absorbances (DO 260, DO 280, DO 230) et par un dépôt et migration sur gel d'agarose
2. Protocoles
2-1 Protocoles pour les réactions de séquence : ABI Prism BigDye Terminator Cycle Sequencing Ready -version 3.1 ou version 1.1
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Type de matrice
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Quantité nécessaire
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Produit PCR
200 -500 bp 500 - 1000 bp 1000 - 2000 bp > 2000 bp |
8 - 10 ng 15 - 20 ng 10 - 40 ng 30 - 50 ng |
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ADN Plasmidique
de 4.5 à 8 kb ± 15 kb |
75-150 ng 200 à 500 ng |
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Cosmide, fosmide (`± 40 kb)
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0.5 - 1.0 µg
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BAC
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1.5 à 2 µg
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| ADN génome bactérien | 2 - 3 µg |
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Réactifs
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Produit PCR 200-500 pb
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Produit PCR 500-1000 pb
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Produit PCR >1000 pb | ADN plasmidique |
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Amorce à 4 µM
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1 µl
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1 µl | 1 µl |
1 µl |
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ABI Prism solution version 3.1 ou 1.1
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0.5 µl
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0.8 µl | 1 µl |
1 µl |
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Tampon 5 X
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2 µl
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2 µl |
2.5 µl |
2 µl |
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matrice
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cf tableau sus-cité
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cf tableau sus-cité |
cf tableau sus-cité |
cf tableau sus-cité |
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H2O
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qsp 10 µl
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qsp 10 µl |
qsp 10 µl |
qsp 10 µl |
Ne jamais mettre plus de 1 µl de ABI Prism solution
Mélange réactionnel pour une réaction de séquence dans un volume final de 20 µl :
| Réactifs | Fosmide/Cosmide | ADN BAC |
| Tampon 5X | 3.5 µl | 3.5 µl |
| ABI Prism solution version 3.1 ou 1.1 |
2 µl |
2 µl |
| Amorce à 10 µM | 1 µl |
1 µl |
| matrice | cf tableau sus-cité | cf tableau sus-cité |
| H2O | qsp 20 µl | qsp 20 µl |
Ne jamais mettre plus de 2 µl de ABI Prism solution
- Programme utilisé pour une machine GeneAmp 9700 :
96°C 1 min
96°C 10 sec }
50°C 5 sec } 25 à 35 cycles
60°C 4 min }
Pour des réactions de séquences à partir de matrices Cosmide, fosmide, BAC:
98°C 2 min
95°C 20 sec }
53°C 10 sec } 50 cycles
60°C 3 min }
72°C 5 min
et dans les deux cas :
15°C for ever
Conserver la plaque à 4°C ou à -20°C
2-2 Elimination de l’excès des réactifs de séquençage par précipitation éthanol
- Ajouter 1µl d'acétate de sodium 3M, 1µl d'EDTA 125mM et 50µl d'éthanol 95 % dans chaque puits.
- Retourner la plaque plusieurs fois et laisser 15 minutes sur la paillasse.
- Centrifuger pendant 30 minutes à 3300 rpm à 15°C. -
- Jeter le surnageant.
- Centrifuger la plaque à l'envers posée sur du papier absorbant à 1000 rpm pendant 1 minute. (élimination des traces résiduelles d'éthanol).
- Ajouter 50 µl d'éthanol 70 %.
- Centrifuger pendant 15 minutes à 3300 rpm à 15 °C.
- Jeter le surnageant.
- Centrifuger la plaque à l'envers posée sur du papier absorbant à 1000 rpm pendant 1 minute. (élimination des traces résiduelles d'éthanol).
- Laisser sécher à l'air libre sur la paillasse 15 minutes.
- Conserver la plaque à -20°C avant le chargement sur les séquenceurs à capillaires.
Purification des produits PCR en plaque 96 puits (un exemple de protocole de purification avec Biogel P100)
1. Réactifs et produits
- P100 gel fine (Biorad cat. 150-4174)
- Plaque à fond filtrant 0,45 µm : Multiscreen MAHV N45 (Millipore)
- Adaptateur (Multiscreen centrifuge frame aqueous Ð MACF09604- Millipore)
- H2O filtrée type MilliQ Synthesis (Millipore) et autoclavée
- Plaque 96 puits
- Centrifugeuse pour plaque (ex : 5810 Eppendorf)
2. Protocoles
2-1 Préparation de la solution du Biogel P100
- Mélanger 50 gr de gel P100 dans un litre d'H2O.
- Préparer au moins 24 heures à l'avance.
- Stocker à + 4 °C.
2-2 Purification
- Faire le montage suivant : plaque à fond filtrant 0,45 µm + adaptateur + plaque de récupération (poubelle)
- Déposer 200 µl de gel P100 dans chaque puits de la plaque MAHV N45
- Centrifuger pendant 3 minutes à 1500 rpm (accélération 3, décélération 0) à température ambiante.
- Déposer à nouveau 200 µl de gel P100 dans chaque puit de la plaque MAHV N45.
- Centrifuger pendant 3 minutes à 1500 rpm (accélération 3, décélération 0) à température ambiante.
- Faire le montage suivant : plaque contenant le gel + adaptateur + plaque 96 puits destinée à recueillir les échantillons purifiés.
- Déposer au centre de chaque puits, les produits PCR à purifier.
- Centrifuger pendant 4 minutes à 1500 rpm (accélération 3, décélération 0) à température ambiante.
- Les produits PCR purifiés sont dans la plaque 96 puits.
- Conserver la plaque à 4 °C ou à - 20 °C.